Produção de bal

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UNIVERSIDADE FEDERAL DE SÃO JOÃO DEL-REI

CAMPUS CENTRO OESTE DONA LINDU

PROJETO DE POPULARIZAÇÃO DA CIÊNCIA E TECNOLOGIA

Oficina de

Ensino de Ciências

Professores Organizadores:

Prof. Dr. Adriano Cancelier

Prof. Dr. Adriano da Silva

Prof.  MSc. Daniel Bonoto Gonçalves

Prof. Dr. José Antônio da Silva

Profa. Dra. Juliana T. de Maghalhães

Prof. Dr. Paulo Afonso Granjeiro

Prof. Dr. Saulo Luís da Silva

Alunos Envolvidos:

Aline Regiele Pesoti

Anderson Kenedy Santos

Braz de Souza Marotti

Diego Ângelo Duarte

Mariana de Fátima Madureira

 

Divinópolis - MG

Atividade antimicrobiana

Profa. Dra. Juliana Teixeira de Magalhães

Introdução:

Antimicrobianos são substâncias químicas naturais ou sintéticas com capacidade de matar ou inibir crescimento de microrganismos. Uma variedade de produtos químicos possui esta capacidade. Os agentes que matam são chamados de microbicidas e os que inibem o crescimento de microbiostáticos. Assim, temos os bactericidas, fungicidas, viricidas, bacteriostáticos, fungistáticos e viristáticos. A atividade antimicrobiana é avaliada determinando-se a menor quantidade de agente necessária para inibir o crescimento de um organismo teste.

Materiais:

• Agentes químicos: água oxigenada a 3%; hipoclorito de sódio a 2%; enxágüe bucal comercial; desinfetante comercial.
• Microrganismos: Escherichia coli e Staphylococcus aureus.
• Outros: discos de papel, pinça, placas com meio de cultura, swab, régua.

Metodologia 1:

1. As bactérias foram previamente crescidas em meio de cultura líquido por 24h a 37°C;

2. Mergulhar o swab nas culturas e espalhar por toda a placa de petri preenchendo todos os espaços com as bactérias;

3. Com a pinça, mergulhar nas soluções químicas, os discos de papel e em seguida, colocar nas placas de petri previamente inoculadas com o microrganismo;

4. Incubar as placas por 24h a 37°C;

5. Medir o diâmetro dos halos formados para cada agente químico com ajuda da régua;

6. Anotar os resultados e verificar qual agente foi mais eficiente e qual bactéria foi mais resistente.

Metodologia 2:

1. Delimitar uma área de 10cmx10cm do piso do laboratório;

2. Esfregar o swab nesta área;

3. Dividir ao meio a placa de petri com uma caneta. Em seguida, em uma das metades passar o swab;

4. Efetuar a limpeza da área delimitada com algum agente químico e então, com outro swab, esfregar na área limpa;

5. Passar este swab no outro lado da placa de petri;

6. Incubar as placas por 24h a 37°C e analisar os resultados.

7. Este mesmo procedimento pode ser realizado com a palma da mão de uma pessoa.

Purificação de Proteínas Vegetais

Prof. Dr. Paulo Afonso Granjeiro

Objetivo:

Purificar proteínas de extratos vegetais.

Procedimento 1: Preparo do Extrato Vegetal:

• Pesar 30g da Farinha de semente vegetal
• Acrescentar 150mL de Solução Salina 0,1M pH 6,8
• Deixar em agitação por 1 hora

Procedimento 2: Centrifugação do extrato vegetal

• Verter todo extrato vegetal em tubos falcon
• Levar a centrífuga e centrifugar de acordo com os seguintes parâmetros: 3500rpm, 30 minutos, 20°C
• Recolher o sobrenadante e descartar o precitado

Procedimento 3: Diálise

• Lavar o saco de diálise com água destilada
• Prender uma das extremidades com um grampo
• Verter todo sobrenadante vegetal dentro do saco de diálise
• Prender a outra extremidade com outro grampo, deixando um espaço entre o líquido e o grampo
• Colocar o saco de diálise dentro de um reservatório contendo água destilada
• Tampar o reservatório com papel filme
• Deixar em agitação lenta
• Trocar a água do reservatório de hora em hora até completar 24 horas.

Procedimento 4: Liofilização

• Retirar o saco de diálise da água destilada
• Verter todo o conteúdo em erlenmeyer, dividindo o volume de 30mL por erlenmeyer.
• Vedar os erlenmeyer com plástico filme, fazer pequenos furos neste plástico e identificar os erlenmeyer
• Congelar o extrato em nitrogênio líquido
• Levar para liofilização

Procedimento 5: Cromatografia

• Calibrar o aparelho FPLC com um fluxo de 0,5mL/min
• Ressuspender o extrato liofilizado em AMBIC 1M na seguinte proporção: 0,4g em 2mL AMBIC 1M
• Homogeneizar bem
• Desconectar a mangueira da parte superior da coluna cromatográfica e retirar o tampão com auxílio de uma pipeta Pasteur
• Aplicar a amostra com cuidado
• Esperar esta descer pela resina, completar com tampão e conectar a mangueira novamente
• Coletar as amostras de acordo com os picos apresentados.

Experimento: Produção de Biodiesel a partir de Óleo de Soja

Prof. Dr. Adriano Cancelier

Prof. Dr. Adriano da Silva

1 - INTRODUÇÃO:

        Atualmente, sabe-se que as fontes de combustíveis fósseis estão se esgotando (RATHMANN et al., 2005). Mesmo assim, a principal fonte de energia que continua sendo utilizada nos dias atuais é composta de fontes não renováveis do carbono fóssil, como petróleo, carvão e gás natural (PERES et al., 2005). A crescente preocupação com o meio e a preocupação com as mudanças climáticas que vêm ocorrendo estão colocando em evidência a própria sustentabilidade do atual padrão de consumo energético. Reunindo todos esses fatores, cuja importância varia entre os países, tem-se um indicativo que pode viabilizar economicamente novas fontes de energia de biomassa em vários países do mundo (MELLO et al., 2007).