Relatório Farmacognosia Taninos

1- INTRODUÇÃO

1.1 Taninos

Swain & Bate-Smith citados por Sarkar & Howarth (1976) definem taninos como compostos fenólicos solúveis em água, com peso molecular entre 500 e 3000 e habilidade para precipitar proteína. Mais especificamente os taninos são compostos de alto peso molecular, que contêm suficientes grupos hidroxila fenólica, para permitir a formação de ligações cruzadas estáveis com proteínas. [1]

Na forma não oxidada os taninos reagem com as proteínas através de pontes de hidrogênio e/ou ligações hidrofóbicas. Quando oxidados os taninos se transformam em quinonas, as quais formam ligações covalentes com alguns grupos funcionais das proteínas, principalmente os grupos sulfidrilos da cisteína e ε-amino da lisina. [2]

Os taninos podem ser classificados como hidrolisáveis (Figura 1) e condensados (Figura 2). Os taninos hidrolisáveis por hidrólise ácida liberam ácidos fenólicos: gálico, caféico, elágico e um açúcar (Sgarbieri, 1996). O ácido tânico é um típico tanino hidrolisável, o qual é quebrado por enzimas ou de forma espontânea. [1]

Os taninos condensados (TC) ou proantocianidinas são constituídos por unidades flavanol: flava-3-ols (catequina) ou flavan 3,4-diols (leucoantocianinas). Eles estão presente em maior quantidade nos alimentos normalmente consumidos 12, 32. Os TC podem conter duas a cinqüenta unidades flavanóides; possuem estruturação complexa; são resistentes à hidrólise, mas podem ser solúveis em solventes orgânicos aquosos, dependendo de sua estrutura. [3]

Figura 1. Estrutura química de tanino hidrolisável.

Figura 2. Estrutura química de tanino condensado.

Alguns países sul americano como Paraguai e Argentina investiram internamente na exploração dos extratos tânicos, onde cresceram economicamente alcançando uma melhor colocação nos mercados da Europa e da América do Norte, com quebracho e acácia devido a indústria de curtume na década de trinta. Assim, como já são conhecidas as ações antitumorais e anticarcinogênica, taninos têm efeitos inibidores de tumores, pela formação de radicais livres estáveis, inibem a peroxidação de lípidios e outras substâncias. São usados como agentes antimicrobianos em geral (fungicidas e antibacterianos), como antitermitas, como reguladores de crescimento e germinação de plantas e funções relacionadas a estas. [4]

1.2 Psidium guajava

A espécie Psidium guajava (Figura 3), mais conhecida como goiabeira, apresenta arbusto perene, da família das Mirtáceas, com altura de até 07 metros, tronco de até 20 cm, recoberto de uma casca marrom, que se desprende do tronco em finas camadas. Folhas elípticas, de 4 a 12 cm, com nervuras proeminentes. Pedúnculos axilares com 1 a 3 flores e fruto globoso ou afilado, amarelo, de tamanho variável. [5]

Originária da América tropical, estando distribuída atualmente em todas as regiões tropicais e subtropicais do mundo, inclusive em algumas regiões temperadas da Europa, em altitude de até 1.200 m. Existem mais de 90 variedades de goiaba, e a maior produção está no Brasil, Índia, Colômbia, Cuba, Estados Unidos e México. [5]

Utilizada como antidiarréica, antiespasmódica (combate as cólicas), antimicrobiana (aplicação tópica em lesões de pele e mucosas, infecções diversas, herpes e banhos de assento), hipoglicemiante, antioxidante e antiagregante plaquetária. [5]

Figura 3. Goiabeira.

2- OBJETIVOS

Identificar a presença de taninos na espécie vegetal Psidium guajava (L.) (Myrtaceae).

3- MATERIAIS E EQUIPAMENTOS

• Béquer 100mL

• Tubo de ensaio

• Funil

• Espátula

• Papel de filtro

• Balança analítica

• Placa de aquecimento

• Proveta de 50ml

• Suporte para tubos de ensaio

• Pipeta Pasteur

• Pipeta Graduada

• Água destilada

• Solução de Cloreto Férrico

• Solução de Acetato de Chumbo

• Solução de Acetato de Cobre

• Solução de cafeína

• Solução contendo alcalóides (Atroveram)

• Ácido clorídrico 5%

• Solução de gelatina

4- METODOLOGIA

Primeiramente pesou-se 1,07 gramas de folhas de Psidium guajava, após isso foram adicionados 50 mL de água destilada no béquer e essa mistura foi levada a fervura por 10 minutos. Após o tempo determinado, retirou-se o béquer do aquecimento e o mesmo esfriou por 5 minutos. A solução então foi filtrada e completou-se com água até se obter 50 mL de volume final. Em seguida, 5 mL da solução obtida foram adicionados em 6 tubos de ensaio numerados de 1 a 6.

Tubo de ensaio 1

Adicionou-se 2 gotas da solução de cloreto férrico e verificou-se a alteração de cor resultante.

Tubo de ensaio 2

Adicionou-se 2 gotas da solução de acetato de chumbo e verificou-se a presença e a cor do precipitado obtido.

Tubo de ensaio 3

Adicionou-se 2 gotas da solução de acetato de cobre e verificou-se a presença e a cor do precipitado obtido.

Tubo de ensaio 4

Adicionou-se 15 gotas da solução de cafeína e verificou-se a turvação resultante. Aguardou-se 15 minutos e verificou-se se houve sedimentação do precipitado.

Tubo de ensaio 5

Adicionou-se