Relatório de Atividade com Fungos

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UFAM

Universidade Federal do Amazonas

Luciana Barros Santos

Biodiversidade

Módulo-Fungos

Manaus-Am

2022

Biotecnologia

Luciana Barros Santos-N° matrícula:22154560

Biodiversidade-Módulo Fungos

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Manaus-Am

2022

Introdução

Os Fungos possuem um papel ecológico muito importante também desempenhado por algumas bactérias. Apesar da sua importância na ciclagem de nutrientes,essa característica afeta diretamente os interesses econômicos do homem,que acabam sofrendo com o apodrecimento de  vários produtos principalmente alimentos. As espécies que se nutrem de restos de outros seres vivos recebem o nome de espécies sapróbias. Além de decompositores, os fungos destacam-se por suas associações mutualísticas na formação de líquens e micorrizas. Os liquens são formados pela associação, principalmente, de ascomicetos com algas verdes ou cianobactérias. Nessa associação ambos são beneficiados, uma vez que o fungo protege a alga ou cianobactéria contra ressecamento e estas lhe oferecem matéria orgânica. Já as micorrizas são associações entre fungos e raízes de plantas. Nesses casos, os fungos ajudam a planta a obter nutrientes, tais como o fósforo, e as plantas, por sua vez, fornecem carbono orgânico para os fungos.

Para um estudo mais profundo foi realizado uma série de atividades laboratoriais ministrado pela Professora Sônia e assistentes. No primeiro dia de atividade foi coletado primeiramente materiais no solo e ar nas proximidades da biblioteca do setor Sul na Universidade Federal do Amazonas(UFAM).

1- TÉCNICA DE COLETA DE FUNGOS DO AR

Finalidade: Determinar a microbiota de fungos anemófilos de determinada região e verificar se os fungos isolados possuem potencial alergênico e as causas da rinites alérgicas observadas.

Fundamento: a capacidade de suspensão de conídios de fungos no ar e sua sedimentação.

Procedimentos:

• Usar EPI, batas, luvas e máscaras.
• Identificar com data, local da coleta, meio de cultura e nome do coletador
• Em um ângulo de 90º , sobre uma das mãos expor uma placa de Petri contendo meio de cultura de 20 a 30 minutos ao ar.
•  Vedar a placa e incubar durante 30 dias, e acompanhar o crescimento de UFC a cada 24h.

OBS: Verificar as condições meteorológicas do dia de coleta.

Sucessivamente foi coletado amostras do solo e colocados em uma placa de Petri e executado a técnica de diluição sucessiva de Clark.

2-Técnica da diluição sucessiva de Clark

1. Pesar 1g da amostra de solo e adicionar em 10 mL de água destilada estéril contida em tubo de ensaio (diluição 1:10);

2. Homogeneizar por meio de agitação;

3. Fazer uma diluição em série, a partir da retirada de 1mL da suspensão inicial e transferência desta para outro tubo contendo 9 mL de água destilada estéril (diluição 1:100), com nova homogeneização;

4. Repetir a operação (diluição 1:1000);

5. Retirar alíquotas de 0,1mL (100µL) das diluições 1:100 e 1:1000 e plaquear (spread plate), em duplicata, em placas contendo o meio seletivo Ágar Amido ou Ágar Sabouraud, usando uma alça de Drigalsky homogeneamente espalhar o material em toda a superfície do meio.

6. Incubar as placas a temperatura ambiente, acompanhando o aparecimento das colônias a cada 24h, por no mínimo uma semana.

Na segunda aula laboratorial uma semana depois foi feito a determinação da micromorfologia.

3 Determinação da Micromorfologia.

Exame Microscópico de Culturas de Fungos

Finalidade: Para o estudo morfológico, identificação de culturas e estudos sobre a ação de fatores diversos.

Fundamento: os fungos para serem identificados, devem ser estudados em seus caracteres microscópicos, verificando-se o tipo de órgãos vegetativos e as características dos órgãos de reprodução.

Preparar lâminas, com azul de lactofenol e observar ao microscópio, na objetiva de 40X, as estruturas e arranjos característicos apresentados pelas leveduras e pelo micélio reprodutivo dos fungos filamentosos.

O resultado da amostra foi o fungo Fusarium, a classe Sordariomycetes em geral agrupando espécies que formam anamorfos filamentosos que produzem manchas brancas, rentes ao substrato, agrupadas em aglomerados de reprodução com esporos facilmente reconhecíveis ao microscópio pela sua forma de meia-lua ou de canoa.

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Após esse procedimento foi feito a determinação da Macromorfologia.

Determinação da Macromorfologia

Finalidade: identificação de amostras, estudos genéticos, atividades de drogas etc.

Fundamento: Os estudos macroscópicos devem ser baseados nas seguintes características:

1. Taxa de crescimento – lento, médio ou rápido;
2. Aspecto – cotonoso, terroso, lanoso, pulverulento, cremoso, úmido, seco;
3. Cor – verso e anverso, cor da colônia e pigmento difusível;
4. Consistência – branda, papirácea, pastosa, coriácea, lenhosa, mole, dura;
5. Cheiro;
6. Contorno – circular, oval, elíptico, irregular, rizóide, amebóide, etc;
7. Borda – ondulada, inteira denteada, lacerada, ciliada, lobulada, etc;
8. Topografia da superfície e do reverso – dobras, sulcos, elevações, depressões, franjas, pregas, lisas, planas, enrugadas, cerebriformas, radiais etc;
9. Presença de micélio aéreo ou profundo;
10. Tamanho.

 

1-Taxa de crescimento: Médio/Médio

2-Aspecto:Terroso/Cotonoso

3-Cor:Preto/Branco

4-Consistência-Dura/Branda

5-Cheiro: --

6-Contorno:Irregular/Irregular

7-Borda:Inteira denteada/Lacerada

8- Topografia da superfície e do reverso:Elesvações/Lisas

9- Presença de micélio aéreo ou profundo: --

10-Tamanho: --

   
1-Taxa de crescimento: Grande e Rápido[pic 4]

2-Aspecto:Cotonoso

3-Cor:Branco e verde

4-Consistência-Branda

5-Cheiro: --