O Encontro Presencial Situação de Aprendizagem

[pic 1][pic 2]

Nome dos integrantes do grupo: Juliana, Julia Gabrielle, Valdir e Charlene      Data: 04/03/2022

Encontro Presencial 4 - Situação de Aprendizagem 2 – Atividade 3

Determinação de proteína em salsicha

1. Princípio do método de determinação de proteína:

A determinação de proteínas baseia-se na redução do nitrogênio da proteína e a transformação em sulfato de amônio. Este método, idealizado em 1883, tem sofrido numerosas modificações e adaptações, porém sempre se baseia em três etapas principais: digestão, onde cerca de 1g de amostra foi colocada em papel filtro, dobrado de maneira a conter a amostra e colado em tubo micro-Kjeldahl com 1g de catalisador, depois, adicionado 20ml de ácido sulfúrico (PA), o tubo foi colocada na máquina digestora à 400°C por cerca de 4 horas, a temperatura de 400°C deve ser atingida gradativamente, de 50 em 50°C, após o tempo de digestão estabelecido acima, retira-se o tudo do digestor, nesse momento a coloração deverá ser esverdeada. Após essa etapa vem a de destilação, colocou-se 25ml de Hidróxido de sódio e 10ml de ácido bórico em um Erlenmeyer, onde o líquido obteve uma coloração rosada e colocamos ao lado direito do destilador, ao lado esquerdo colocamos os tubos de micro-kjeldahl retirados da máquina digestora, liga-se a caldeira e o ponto final da destilação é quando o Erlenmeyer muda a cor da sua mistura para verde, e por fim, vem a etapa de titulação, nesse momento adicionamos 10ml de água destilada no Erlenmeyer com nossa solução e 25ml de HCL na bureta, zerou-se o menisco e procedemos a titulação, o final dela é quando obtivemos a coloração rósea. As principais vantagens desse método são:

• Aplicável a muitos tipos de alimentos
• Relativamente simples
• Não é caro
• Preciso. Trata-se de um método oficial para a determinação de proteínas
• Pode analisar microgramas de proteína em um alimento (micro Kjeldhal)

1. Equipamentos, vidrarias e utensílios utilizados e suas funções:

• Erlenmeyer – usado para titulação e destilação
• Luva térmica – manusear o tubo de micro-kjeldahl após aquecimentos.
• Bureta – utilizada para titulação
• Tubo de micro-kjeldahl – utilizado para etapa de digestão
• Espátula – coletar amostra e catalisador
• Bloco digestor – digerir a amostra
• Capela de exaustão – elimina vapores tóxicos e odores durante a manipulação de reagentes
• Destilador de nitrogênio – utilizado para destilação de nitrogênio amoniacal.

REAGENTES:

• Ácido sulfúrico - função
• Hidróxido de sódio – digerir a amostra
• HCl – destilar a amostra
• Ácido bórico – destilar a amostra
• Catalisador – catálise
• Vermelho de metila – titulação
• Verde bromocresol – indicador

1. Fluxograma com as etapas da análise:

[pic 3]

[pic 4]

[pic 5]

[pic 6]

[pic 7]

[pic 8]

[pic 9]

[pic 10]

[pic 11]

[pic 12]

[pic 13]

1. Cuidados necessários durante a análise:

• Utilizar luvas térmicas para retirar o tubo do bloco digestor e da máquina de destilação
• Utilizar luvas nitrílica para manipulação dos ácidos
• Sempre usar a capela de exaustão durante uso do bloco digestor e adição de ácido
• Ligar o bloco digestor gradativamente
• Verificar se as vidrarias e outros utensílios não contém água

1. Cálculo do teor de proteína:

Amostra	Peso da amostra (P)	Volume de HCl gasto na titulação (V)	Fator de correção da solução de HCl (f)	Fator de conversão de proteína (F)	%  Nitrogênio total	% de proteína
A	0,1023	25	1	6,25	3,42	21,38
B	0,1045	25	1	6,25	3,35	20,94
C	0,1086	25	1	6,25	3,22	20,14
Média	20,82
Desvio padrão
Coeficiente de variação

Fórmulas:

        

[pic 14]

        

🡪 A        = 3,42%[pic 15]

🡪 B        = 3,35%[pic 16]

🡪 C        = 3,22%[pic 17]

[pic 18]

🡪 A      = 21,38[pic 19]

...